Ngày nhận bài: 14-08-2018
Ngày duyệt đăng: 18-03-2019
DOI:
Lượt xem
Download
Cách trích dẫn:
ẢNH HƯỞNG CỦA ÁNH SÁNG LED, CHẤT KÍCH ỨNG ĐẾN SINH TRƯỞNG VÀ HOẠT TÍNH CHỐNG OXY HÓA CỦA CALLUS CÀ GAI LEO (Solanum hainanese)
,
Nguyễn Thị Thanh Phương
3
,
Đoàn Ngọc Hân
4
,
Nguyễn Văn Trinh
5
Từ khóa
Cà gai leo, nuôi cấy callus, đèn LED, chất kích ứng, axit salicylic, chất chiết nấm men
Tóm tắt
Cà gai leo (Solanum hainanense) là cây dược liệu được đánh giá cao về tác dụng giải độc gan.Trong cây cà gai leo có chứa các chất alkaloid, glycoalkaloid có tác dụng ức chế sự sao chép và làm bất hoạt virus viêm gan B, chống oxy hóa, ngăn ngừa xơ gan hiệu quả. Nuôi cấy callus (mô sẹo) cà gai leo là một phương thức tiềm năng để chủ động tạo nguồn nguyên liệu dược an toàn và chất lượng caovà là mục tiêu của nghiên cứu. Khi nuôi cấy in vitrotrên môi trường đặc, phổ ánh sáng và các chất kích ứng (chất chiết nấm men và axit salicylic) có tác động rất tích cực đến sự tăng sinh khối và hoạt tính chống oxy hóa của callus cà gai leo. Chiếu sáng bằng đèn LED có phổ ánh sáng Blue/Red: 30/70% đã làm tăng sinh khối khô của callus gấp 2,46 lần so với chiếu sáng bằng đèn huỳnh quang T8. Khi bổ sung 100M axit salicylic hoặc 3g/L chất chiết nấm men vào môi trường nuôi cấy làm tăng sinh khối khô của callus lần lượt là 2,43 và 3,04 lần so với đối chứng. Hơn nữa, bổ sung các chất kích ứng làm tăng hoạt tính chống oxy hóa của dịch chiết callus khoảng1,26-1,49 lần so với dịch chiết từ callus đối chứng và tăng khoảng2,31-2,73 lần so với dịch chiết từ cây tự nhiên hai năm tuổi. Các kết quả này đóng góp dữ liệu khoa học để phát triển phương pháp nuôi cấy in vitronhằm nâng cao sinh khối và hoạt tính chống oxy hóa của callus cà gai leo và là tiền đề để mở rộng nghiên cứu sang các cây dược liệu khác.
Tài liệu tham khảo
Nguyễn Hữu Thuần Anh (2016). Nghiên cứu ảnh hưởng của một số elicitor lên khả năng tích lũy solasodine ở tế bào in vitrocủa cây cà gai leo (Solanum hainanense Hance). Luận án tiến sĩ Sinh lý học thực vật. Trường đại học Khoa học, Đại học Huế.
Cioć Monika, Agnieszka Szewczyk, Marek Żupnik, Andrzej Kalisz, Bożena Pawłowska (2018). LED lighting afects plant growth, morphogenesis and phytochemical contents of Myrtus communis L. in vitro.Plant Cell Tiss Organ Cult.,132: 433-447.
Gamborg O.L., Philip G.C. (1995). Plant cell, tissue and organ culture. Pub. Springer, pp. 37-39.
Gupta S.D., Jatothu B. (2013). Fundamentals and applications of light-emitting diodes (LEDs) in in vitroplant growth and morphogenesis. Plant Biotechnol Rep., 7:211-220.
Hasan Md. Mohidul,Tufail Bashir,Ritesh Ghosh,Sun Keun Lee, Hanhong Bae(2017). An Overview of LEDs’ Effects on the Production of Bioactive Compounds and Crop Quality. Molecules, 22(9): 1420; https://doi.org/10.3390/molecules22091420.
Hussain Sarfaraj Md., Sheeba Fareed, Saba Ansari, Md. Akhlaquer Rahman, Iffat Zareen Ahmad, Mohd. Saeed(2012). Current approaches toward production of secondary plant metabolites. J Pharm Bioallied Sc.,4(1): 10-20.
Nguyễn Thị Minh Khai, Phạm Kim Mãn, Nguyễn Bích Thu, Vũ Kim Thu, Phạm Thanh Trúc, Lã Kim Oanh, Nguyễn Văn Mùi, Trịnh Thị Xuân Hòa, Nguyễn Anh Tuấn, Mão NĐ(?)(2001). Nghiên cứu điều chế thuốc Haina điều trị viêm gan B mạn hoạt động từ cà gai leo. Tạp chí Dược liệu, 6(2): 68-71.
Loc N., Giang N. (2012). Effects of elicitors on the enhancement of asiaticoside biosynthesis in cell cultures of centella (Centella asiaticaL. Urban). Chemical Papers,66(7): 642-648.
Nguyen Hoang Loc, Nguyen Huu Thuan Anh, Le Thi Minh Khuyen, Ton Nu Thuy An (2014). Effects of yeast extract and methyl jasmonate on the enhancement of solasodine biosynthesis in cell cultures of Solanum hainanense Hance.J. BioSci. Biotech.,3(1): 1-6.
Murashige T. and Skoog F. (1962). A revised medium for rapid growth bio assys with tobacco tissue cultures. Physiology Plant,15: 473-479.
Nhut D.T., Nguyen P.L.H., Don N.T., Hien N.T.T., Huy N.P., Nam N.B., Vinh B.T., Luan T.C. (2014). Induction, growth and paclitaxel content of needle and petiole-derived calli in Hymalayan Yew (Taxus wallichianaZucc.) under light-emitting diodes. Acta Biologica Cracoviensia Series Botanica 56/2:107-114.
Nhut D.T., N.P. Huy, N.T. Tai, N.B. Nam, V.Q. Luan, V.T. Hien, H.T. Tung, B.T. Vinh, T.C. Luan (2015). Light-emitting diodes and their potential in callus growth, plantlet development and saponin accumulation during somatic embryogenesis of Panax vietnamensisHa et Grushv. Biotechnology and Biotechnological Equipment 29(2):299-308.
SharmaM., SharmaA., Kumar A., Kumar S.B. (2011). Enhancement of Secondary Metabolites in Cultured Plant Cells Through Stress Stimulus. American Journal of Plant Physiology,6(2): 50-71.
Stroev E. A., Makarova V. G., (1989). Determination of lipid peroxidation rate in tissue homogenate laboratory. In: Laboratory Manual in Biochemistry, Mir Publishers, Moscow, pp. 243 -256.
WangJuan,Jian-liLi,JingLi,Jin-xinLi,Shu-jieLiu,Lu-qiHuang,Wen-yuan Gao(2017).Production of Active Compounds in Medicinal Plants: From Plant Tissue Culture to Biosynthesis. Chinese Herbal Medicines, 9(2): 115-125
Yu L.J., Lan W.Z., Qin W.M., Xu H.B. (2001). Effects of salicylic acid on fungal elicitor-induced membrane-lipid peroxidation and taxol production in cell suspension cultures of Taxus chinensis.Process Biochemistry,37(5): 477-482.