LỰA CHỌN CHỦNG GIỐNG PORCINE CIRCOVIRUS TYPE 2(PCV2) ĐỂ SẢN XUẤT VACXIN PHÒNG HỘI CHỨNG CÒI CỌC Ở LỢN CON

Ngày nhận bài: 28-01-2015

Ngày duyệt đăng: 18-04-2015

DOI:

Lượt xem

0

Download

0

Số: Tập 13 Số 3 (2015)

Chuyên mục:

CHĂN NUÔI – THÚ Y – THỦY SẢN

Cách trích dẫn:

Lệ, H., Phan, L., Giáp, N., & Thâu, T. (2024).  LỰA CHỌN CHỦNG GIỐNG PORCINE CIRCOVIRUS TYPE 2(PCV2) ĐỂ SẢN XUẤT VACXIN PHÒNG HỘI CHỨNG CÒI CỌC Ở LỢN CON. Tạp Chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam, 13(3), 406–415. http://testtapchi.vnua.edu.vn/index.php/vjasvn/article/view/178

 LỰA CHỌN CHỦNG GIỐNG PORCINE CIRCOVIRUS TYPE 2(PCV2) ĐỂ SẢN XUẤT VACXIN PHÒNG HỘI CHỨNG CÒI CỌC Ở LỢN CON

Huỳnh Thị Mỹ Lệ (*) 1 , Lê Văn Phan 1 , Nguyễn Văn Giáp 1 , Trịnh Đình Thâu 1

  • 1 Khoa Thú y, Học viện Nông nghiệp Việt Nam

    • Từ khóa

    Chủng giống, Porcine circovirus type 2, vacxin

    Tóm tắt


    Nghiên cứu này của chúng tôi nhằm tạo ra ngân hàng giống PCV2đang lưu hành ở đàn lợn nuôi tại Việt Nam.Đây là những nghiên cứu bước đầu, phục vụ cho những nghiên cứu kế tiếp về vacxin phòng bệnh còi cọc ở lợn sau cai sữa do PCV2 gây ra. Đã có 07 chủng PCV2 phân lập được sử dụng để lựa chọn làm giống gốc sản xuất vacxin. Kết quả kiểm tra độ thuần khiết của virus phân lập cho thấy 100% chủng phân lập không tạp nhiễm với virus CSFV, PRRSV, PPV, PEDV, TGEV, PRV, PAdV và Mycoplasma. Khi kiểm tra với PCV1, có 2 chủng bị tạp nhiễm không đủ điều kiện làm giống gốc. Hiệu giá qua các lần tiếp đời của 05 chủng virus đạt độ thuần khiết trong nghiên cứu này dao động từ 102,00TCID50/ 0,1ml đến 105,75TCID50/ 0,1ml, trong đó03 chủng PCV2 phân lập được có hiệu giá ≥105,00TCID50/ 0,1ml.

    Tài liệu tham khảo

    An DJ, Roh IS, Song DS, Park CK and Park BK (2007). Phylogenetic characterization of porcine circovirus type 2 in PMWS and PDNS Korean pigs between 1999 and 2006.Virus Research, 129: 115-122.

    Allan GM, McNeilly F, McMenamy M, McNair I, Krakowka SG, Timmusk S, Walls D, Donnelly M, Minahin D, Ellis J, Wallgren P, and Fossum C (2007). Temporal distribution of porcine circovirus 2 genogroups recovered from postweaning multisystemic wasting syndrome affected and nonaffected farms in Ireland and Northern Ireland. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation,19: 668-673.

    Fenaux, M., P. G. Halbur, M. Gill, T. E. Toth, and X. J. Meng(2000). Genetic characterization of type 2 Porcine circovirus (PCV-2) from pigs with Postweaning multisystemic wasting syndrome in different geographic regions of North America and development of a differential PCR-restriction fragment length polymorphism assay to detect and differentiate between infections with PCV-1 and PCV-2. J. Clin. Microbiol.,38:2494-2503.

    Hundesa Ayalkibet, Carlos Maluquer de Motes, Silvia Bofill-Mas, Nestor Albinana-Gimenez and Rosina Girones (2006). Identification of human and animal adenoviruses and polyomaviruses for determination of sources of fecal contamination in the environment. Appl Environ Microbiol., 72(12): 7886- 7893.

    Kamau N.A., Park J.Y., Park J.E., Hyun B.H., Yang D.K., Song J.Y. and Shin H.J. (2010). Susceptibility of Mice to porcine epidemic diarrhea virus. Journal of Animal and Veterinary Advances, 9(24): 3114-3116.

    Katharina D.C Stärk,Jacques Nicolet, and Joachim Frey (1998). Detection of Mycoplasma hyopneumoniae by air sampling with a nested PCR assay. Appl Environ Microbiol., 64(2): 543- 548.

    Kim D, Y. Ha, Y. Oh, C. Chae (2010) Prevalence of porcine circovirus types 2a and b in pigs with and without post-weaning multi-systemic wasting syndrome. The veterinary journal, doi: 10.1016/j.tvjl.2010.02.006.

    Kim HH, Park SI, Hyun BH, Park SJ, Jeong YJ, Shin DJ, Chun YH, Hosmillo M, Lee BJ, Kang MI, and Cho KO (2009). Genetic diversity of porcine circovirus type 2 in Korean pigs with postweaning multisystemic wasting syndrome during 2005-2007. Journal of Veterinary Medical Science,71: 349-353.

    Kim, JH, Chee, H, (2003). Multiplex nested PCR compared with in situ hybridization for the differentiation of porcine circoviruses and porcine parvovirus from pigs with postweaning multisystemic wasting syndrome. Can J Vet Res, 67: 133-137.

    Kim So.Y., Dae S. Song, Bong K. Park (2001). Differential detection of transmissible gastroenteritis virus and porcine epidemic diarrhea virus by duplex RT-PCR. J Vet Diagn Invest,13: 516-520.

    Huỳnh Thị Mỹ Lệ và Nguyễn Văn Giáp (2013) Phân lập và xác định một số đặc tính sinh học của porcine circovirus type 2 (PCV2) ở đàn lợn nuôi tại một số tỉnh miền Bắc Việt Nam Tạp chí khoa học và phát triển,11(3):304-309.

    Olvera A, Cortey M and Segalés J (2007). Molecular evolution of porcine circovirus type 2 genomes: phylogeny and clonality. Virology, 357: 175-185.

    Opriessnig, T., O'Neill, K., Gerber, P.F., de Castro, A.M., Gimenez-Lirola, L.G., Beach, N.M., Zhou, L., Meng, X.J., Wang, C. and Halbur, P.G. (2013). A PCV2 vacxin based on genotype 2b is more effective than a 2a-based vaccine to protect against PCV2b or combined PCV2a/2b viremia in pigs with concurrent PCV2, PRRSV and PPV infection. Vaccine,31:487-94.

    Yang Jeong S. , Song Dae S., Kim So Y., Lyoo Kwang S., Park Bong K. (2003). Detection of porcine circovirus type 2 in feces of pigs with or without enteric disease by polymerase chain reaction. J Vet Diagn Invest.,15:369-373.

    Xu, X.G., Chen, G.D., Huang, Y., Ding, L., Li, Z.C., Chang, C.D., Wang, C.Y., Tong, D.W., Liu, H.J. (2012). Development of multiplex PCR for simultaneous detection of six swine DNA and RNA viruses. Journal of Virological Methods,183:69-74.