NHỮNG TIẾN BỘ TRONG KỸ THUẬT HỖ TRỢ SINH SẢN: ỨNG DỤNG TRONG Y TẾ VÀ NÔNG NGHIỆP

Ngày nhận bài: 18-04-2017

Ngày duyệt đăng: 26-07-2017

DOI:

Lượt xem

2

Download

0

Số: Tập 15 Số 7 (2017)

Chuyên mục:

NÔNG HỌC

Cách trích dẫn:

Thuận, N. (2024). NHỮNG TIẾN BỘ TRONG KỸ THUẬT HỖ TRỢ SINH SẢN: ỨNG DỤNG TRONG Y TẾ VÀ NÔNG NGHIỆP. Tạp Chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam, 15(7), 933–939. http://testtapchi.vnua.edu.vn/index.php/vjasvn/article/view/1387

NHỮNG TIẾN BỘ TRONG KỸ THUẬT HỖ TRỢ SINH SẢN: ỨNG DỤNG TRONG Y TẾ VÀ NÔNG NGHIỆP

Nguyễn Văn Thuận (*) 1

  • 1 Khoa Công nghệ Sinh học, Đại học Quốc tếvà Đại học Quốc gia thành phố Hồ Chí Minh

    • Từ khóa

    Blastocyst injection, ICSI, ROSI, SCNT

    Tóm tắt


    Sinh sản trên động vật bậc cao là việc tạo ra thế hệ mới thông qua quá trình thụ tinh giữa trứng và tinh trùng đã chín. Ngày nay, với sự phát triển của công nghệ sinh học sinh sản hiện đại, nhiều kỹ thuật tiến tiến đã được áp dụng và có thể tạo ra thế hệ mới từ tế bào sinh dưỡng, tế bào gốc, hoặc từ trứng và tinh trùng chưa trưởng thành. Trong báo cáo này, chúng tôi sẽ trình bày những tiến bộ trong sinh sản mà chúng tôi đã nghiên cứu trong 20 năm qua; (1) Phương pháp thụ tinh bằng vi tiêm tinh trùng vào trứng (ICSI) và ứng dụng của phương pháp này vào điều trị vô sinh hoặc tạo ra động vật chuyển gen.(2) Phương pháp thụ tinh bằng tiền tinh trùng thông qua kính hiển vi (round spermatid injection) và ứng dụng trong điều trị vô sinh không có tinh trùng. (3) Phương pháp tạo ra thế hệ mới bằng tế bào sinh dưỡng (somatic nuclear transfer), hay còn gọi là nhân bản vô tính động vật (cloning animals). (4) Phương pháp tạo thế hệ mới bằng tế bào gốc kết hợp với phôi tứ bội thông qua kỹ thuật chuyển tế bào gốc vào phôi nang tứ bội. Bên cạnh đó chúng tôi cũng sẽ trình bày những ứng dụng của sự kết hợp các phương pháp sinh sản hiện đại trên trong y học và nông nghiệp.

    Tài liệu tham khảo

    Bui H. T., Wakayama S., Kishigami S., Kim J. H., Van Thuan N., Wakayama T. (2008). The cytoplasm of mouse germinal vesicle stage oocytes can enhance somatic cell nuclear reprogramming. Development, 135: 3935-3945.

    Edwards R. G., Steptoe P. C. and Purdy J. M. (1980). Establishing full‐term human pregnancies using cleaving embryos grown in vitro. Br J. Obstet Gynecol, 87: 737-756.

    Goto K., Kinoshita A., Takuma Y., Ogawa K. (1990). Fertilization in sperm injection in cattle. Theriogenology, 33: 238.

    Hayashi S., Yang J., Christenson L., Yanagimachi R., Hecht N. B. (2003). Mouse preimplantation embryos developed from oocytes injected with round spermatids or spermatozoa have similar but distinct patterns of early messenger RNA expression. Biol Reprod., 69(4): 1170-1176.

    Hiramoto, Y. (1962). Microinjection of the live spermatozoa into sea urchin eggs. Exp. Cell Res., 27: 416-426.

    Hosoi Y., Miyake M., Utsumi K., Iritani A. (1988). Development of rabbit oocytes after microinjection of spermatozoa. Proc 11th Int Cong Anim Reprod A I (Dublin), 3(331).

    Inoue K., Kohda T., Lee J., Ogonuki N., Mochida K, Noguchi Y, Tanemura K, Kaneko - Ishino T, Ishino F, Ogura A (2002). Faithful expression of imprinted genes in cloned mice. Science, pp. 295: 297.

    Kang Y. K., Koo D. B., Park J. S., Choi Y. H., Chung A. S., Lee K. K., Han Y. M. (2001). Aberrant methylation of donor genome in cloned bovine embryos. Nat Genet., 28: 173-177.

    Kishigami S., Mizutani E., Ohta H., Hikichi T., Thuan N. V., Wakayama S., Bui H. T., Wakayama T. (2006). Significant improvement of mouse cloning technique by treatment with trichostatin A after somatic nuclear transfer. Biochem Biophys Res Commun, 340: 183-189.

    Kishigami, S., Van Thuan, N., Wakayama, S., Hikichi, T., and Wakayama, T (2004). A novel method for isolating spermatid nuclei from cytoplasm prior to ROSI in the mouse. Zygote., 12(4): 321-327.

    Ogura A., Matsuda J., Yanagimachi R. (1994). Birth of normal young after electrofusion of mouse oocytes with round spermatids. Proc Natl Acad Sci U S A., 91(16): 7460-7462.

    Palermo G., Joris H., Devroey P., Van Steirteghem A. C. (1992). Pregnancies after intracytoplasmic injection of single spermatozoon into an oocyte. Lancet., 340(8810): 17-18.

    Perry, A. C. F., T. Wakayama, H. Kishikawa, T. Kasai, M. Okabe, Y. Toyoda, and R. Yanagimachi (1999). Mammalian transgenesis by intracytoplasmic sperm injection. Science, 284: 1180-1183.

    Tanaka A., Nagayoshi M., Takemoto Y., Tanaka I., Kusunoki H., Watanabe S., Kuroda K., Takeda S., Ito M., Yanagimachi R. (2015). Fourteen babies born after round spermatid injection into human oocytes. Proc Natl Acad Sci. USA, 112(47): 14629-14634.

    Uehara T., Yanagimachi R. (1976). Microsurgical injection of spermatozoa into hamster eggs with subsequent transformation of sperm nuclei into male pronuclei. Biol Reprod., 15: 467-470.

    Van Thuan N., Bui H. T., Kim J. H., Hikichi T., Wakayama S., Kishigami S., Mizutani E., Wakayama T. (2009). The histone deacetylase inhibitor scriptaid enhances nascent mRNA production and rescues full - term development in cloned inbred mice. Reproduction, 138: 309-317.

    Van Thuan N., Wakayama S., Kishigami S., Wakayama T. (2005). New preservation method for mouse spermatozoa without freezing. Biol Reprod., 72: 444-450.

    Van Thuan N., Kishigami S., Wakayama T. (2010). How to improve the success rate of mouse cloning technology. J Reprod Dev., 56(1): 20-30.

    Van Thuan N., Wakayama S., Kishigami S., Wakayama T. (2006). Donor centrosome regulation of initial spindle formation in mouse somatic cell nuclear transfer: roles of gamma - tubulin and nuclear mitotic apparatus protein 1. Biol Reprod., 74(5): 777-787.

    Wakayama T., Yanagimachi R. (1998). Development of normal mice from oocytes injected with freeze - dried spermatozoa. Nat Biotechnol., 16: 639-641.

    Wakayama S., Kohda T., Obokata H., Tokoro M., Li C., Terashita Y., Mizutani E., Nguyen V. T., Kishigami S., Ishino F., Wakayama T. (2013). Successfuls serial recloning in the mouse over multiple generations. Cell Stem Cell, 12(3): 293-297.

    Wakayama T., Perry A. C. F., Zuccotti M., Johnson K. R. and Yanagimachi R. (1998). Full - term development of mice from enucleated oocytes injected with cumulus cell nuclei. Nature, 394: 369-374.

    Wilmut I., Schnieke A. E., McWhir J., Kind A. J. and Campbell K. H. (1997). Viable offspring derived from fetal and adult mammalian cells. Nature, 385: 810-813.

    Lan Kang, Jianle Wang, Yu Zhang, Zhaohui Kou, Shaorong Gao Kang (2009). iPS cells can support full - term development of tetraploid blastocyst-complemented embryos. Cell Stem Cell, 5(2): 135-138.

    Park M. R., Lee A. R., Bui H. T., Park C., Park K. K., Cho S. G., Song H., Kim J. H., Van Thuan N., Kim J. H. (2011). Chromosome remodeling and differentiation of tetraploid embryos during preimplantation development. Dev. Dyn., 240: 1660-1669.