Received: 11-05-2015
Accepted: 28-06-2016
DOI:
Views
Downloads
How to Cite:
Adventitious Root Induction and Culture of Morinda officinalis How
,
Nguyen Thi Phuong Thao
1
,
Nguyen Thi Thuy Linh
1
,
Nguyen Tuan Minh
1
,
Nguyen Quynh Chi
1
,
Tran Thi Anh Dao
1
Keywords
Adventitious root, -NAA, IAA, IBA, Morinda officinalis How
Abstract
This paper presents the results on induction of adventitious roots of Morinda officinalis How and effect of some chemical factors on adventitious root growth. Stem and leaf explants were cultured on MS medium supplemented with -NAA, IAA and IBA at five concentrations (0.1-1.0 mg/l) to regenerate adventitious roots. Among the auxins, -NAA showed the highest adventitious root formation for stem explants, followed by IAA and IBA. The maximum percentage of stem explants induced root (100%) was obtained when cultured on MS medium supplemented with 0.75 mg/l -NAA after 4 weeks of culture. However, adventitious root induction was not observed in leaf explants cultured on MS + 0.75 mg/l -NAA. Of the two tested media, B5 medium sustained better root growth than MS medium. -NAA, IAA and IBA had positive effect on adventititous root growth and development. After 12 weeks, the highest adventitious root biomass (1.264 g) was obtained on B5 medium supplemented with 1.0 mg/l -NAA.
References
Abdullahil, B. (2010). Growth, secondary metabolite production and antioxidant enzyme response of Morinda citrifoliaadventitious root as affected by auxin and cytokinin. Plant Biotechnology Reports,4(2):109-116.
Amoo,S. O., Aremu,A. O., Staden,J. (2013) Shoot proliferation and rooting treatments influence secondary metabolite production and antioxidant activity in tissue culture-derivedAloe arborescensgrown ex vitro. Plant Growth Regulators, 70: 115-122.
Chen, D.L., Zhang, P., Lin, L., Shuai, O., Zhang, H.M., Liu, S.H., Wang J.Y. (2013). Protective effect of Bajijiasu against -amyloid-induced neurotoxicity in PC12 cells.Cell Molecules Neurobiological, 33(6): 837-850.
Davies, P.J. (1995). Plant Hormones. Kluwer Academic Publishers.
Feng, F., Wang, L.L., Lai, X.P., Li, Y.B., Cao, Z.M., Zhou, Y.J. (2012). Study on oligosaccharides from Morinda officinalis.Zhong Yao Cai, 35(8): 1259-1262.
Hoàng Thị Thế, Nguyễn Thị Phương Thảo, Ninh Thị Thảo, Nguyễn Thị Thủy (2013). Quy trình nhân giống in vitrocây ba kích (Morinda officinalisHow). Tạp chí Khoa học và Phát triển, 11(3): 285-292.
Kim, J. S., Hahn, E. J., Yeung, E. C., Paek, K. Y. (2003). Lateral root development and saponin accumulation as affected by IBA or NAA in adventitious root cultures of Panax ginsengC. A. Meyer. In Vitro Cellular and Developmental Biology - Plant, 39(2): 245-249.
Lê Thị Thúy, Trịnh Mộng Nhi,Phạm Văn Lộc (2014). Khảo sát ảnh hưởng của chất điều hòa tăng trưởng thực vật và môi trường nuôi cấy đến khả năng tạo rễ cà rốt trong nuôi cấy in vitro. Tạp chí Đại học Thủ Dầu Một, 5(18): 62-67.
Li, Y.F., Gong, D.H., Yang, M., Zhao, Y.M., Luo, Z.P. (2003). Inhibition of the oligosaccharides extracted from Morinda officinalis, a Chinese traditional herbal medicine, on the corticosteron induced apoptosis in PC12 cells. Life Sciences, 72(8): 933-942.
Ling, A.P., Tan, K.P., Hussein, S. (2013). Comparative effects of plant growth regulators on leaf and stem explants of Labisia pumila var. alata. Journal of Zhejiang University Science B, 14(7): 621-631.
Litwack,G.(2005).Plant hormone, Vitamins and Hormones. Elsevier locations,72:544.
Nguyễn Thị Liễu, Nguyễn Trung Thành, Nguyễn Văn Kết (2011).Nghiên cứu khả năng tạo rễ bất định của sâm Ngọc Linh (Panax vietnamensisHa etGrushv.) trong nghiên cứu in vitro. Tạp chí Khoa học,Đại học Quốc gia Hà Nội, 27: 30-36.
Nguyễn Thị Ngọc Hương,Võ Thị Bạch Mai (2009). Tìm hiểu sự phát sinh hình thái rễ trong nuôi cấy in vitrocây nhàu (Morinda citrifoliaL.). Tạp chí phát triển Khoa học và Công nghệ,12(17): 100-105.
Nguyễn Trung Thành,Paek Kee Yoeup (2008). Nhân nhanh rễ bất định Nhân sâm Panax ginsengC.A. Meyer: ảnh hưởng của một số nhân tố lý hóa lên sự tăng trưởng sinh khối và sản phẩm trao đổi chất ginsenosides. Tạp chí Khoa học Tự nhiên và Công nghệ, 24:318-323.
Reis,R., Borges,A., Chierrito,T., de Souto,E., de Souza,L., Iacomini,M.,de Oliveira, A., Goncalves,R. (2011). Establishment of adventitious root culture of Stevia rebaudiana Bertoniin a roller bottle system. Plant Cell TissueOrgan Culture,106:329-335.
San José,M. C., Romero,L., Janeiro, L.V.(2012). Effect of indole-3-butyric acid on root formation in Alnus glutinosamicrocuttings.Silva Fennica, 46(5): 643-654.
Taiz,L.,Zeiger (2005).Plant Physiology. The Benjamin/Cummings Publishing Company.
Tiberiapop, Doru,P., Catherine,B. (2001). Auxin control in the formation of adventitious roots.Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca,39(1):307-316.
Torres, K. C. (1989).Tissue culture technique for horticultural crops.Chapman and Hall, New York-London, America, p. 284.
Trần Thanh Hương, Bùi Trang Việt,Feng Teng Yung (2009). Vai trò của các chất điều hòa tăng trưởng thực vật trong sự hình thành rễ bất định từ các khúc cắt mang chồi ở một vài giống chuối (Musasp.). Tạp chí Phát triển Khoa học và Công nghệ, 12(9): 23-30.
Verstraeten I.,Beeckman T., Geelen D. (2013). Adventitious root induction in Arabidopsisthalianaas a model for in vitroroot organogenesis. Methods in Molecular Biology, 959: 159-175.
Võ Châu Tuấn, Huỳnh Minh Tư (2010). Nghiên cứu nhân giống cây ba kích (Morinda officinalisHow) bằng phương pháp nuôi cấy mô.Tạp chí Khoa học và Công nghệ, Đại học Đà Nẵng, 5(40):01-09.
Võ Thị Bạch Mai (2004). Sự phát triển chồi và rễ. Nhà xuất bảnĐại học Quốc gia TP HCM.
Zhang, H., Li, J., Xia, J., Lin, S. (2013). Antioxidant activity and physicochemical properties of an acidic polysaccharide from Morinda officinalis. International Journal of Biological Macromolecules, 58: 7-12.