Received: 04-04-2016
Accepted: 06-06-2016
DOI:
Views
Downloads
How to Cite:
Main Pathological Characteristics of Tre ChickenInfected with Coccidiain ThuaThienHue
,
Dinh Thi Bich Lan
1
,
Nguyen Vu Son
2
,
Pham Hong Ngan
2
,
Nguyen Huu Nam
3
Keywords
Clinical parameter, coccidiosis, pathological characteristics, prevalence, Tre chicken
Abstract
This study was conducted to determine some clinical parameters and pathological charactesistics of Tre chicken infected with coccidiosis in Thua Thien Hue. 978 fecal samples of chicken aged 1-42 days were collected and tested for oocyst presence by flotation method and some clinical parameters were determined. Concurrently, all died chickens caused by coccidiosis were slaughtered to collect the samples for determination of both macroscopic and microscopic pathological changes. Results showed that the average coccidian infection of three communes was 50,92%. Tre chickens were infected with coccidia from a very early stage and oocysts appeared in excrement in the period of 8-14 days of age. The rate and intensity of coccus infection increased and reached the peak when chickens aged of approximately 15 - 35 days, then reduced gradually. Infected chickens showed droop, inactiveness, watery diarrhea with mucus, and bloody or creamy exudate feces. The main macroscopic lesions of infected chickens showed hemorrhagic and huge necrosis in intestine and caecum, distended caecum and eroded mucosal layer. The microscopic lesions consisted of severe hemorrhage, necrosis, degeneration of epithelial cells, and inflammatory infiltrations in caecum. On the other hand, pathogenic characteristics also could be observed in ileum and rectum. The different stages of coccidia were also observed in the epithelial cells.
References
Adamu, M., C. Boonkaewwan, N. Gongruttananun and M. Vongpakorn (2013). Hematological, Biochemical and Histopathological Changes Caused by Coccidiosis in Chickens. Kasetsart J. (Nat. Sci.),47:238 - 246.
Conway, D.P. and M.E. McKenzie (2007). Poultry Coccidiosis, Diagnostic and Testing Proceduces. Iowa, USA: Blackwell Publishing.
Conway, D.P., K. Sasai, S.M. Gaafar and C.D. Smothers (1993). Effects of Different Levels of Oocyst Inocula ofEimeria acervulina,E. tenella, and E. maximaon Plasma Constituents, Packed Cell Volume, Lesion Scores, and Performance in Chickens. Avian Dis.,37:118-123.
Dương Công Thuận (2002). Phòng trị bệnh ký sinh trùng cho gà nuôi gia đình.Nhà xuất bản nông nghiệp, Hà Nội.
Đoàn Thị Thảo, Trần Đức Hoàn, Nguyễn Thị Hương Giang, Nguyễn Hữu Nam và Phạm Hồng Ngân(2015). Một số chỉ tiêu lâm sàng và biến đổi bệnh lý ở gà mắc bệnh cầu trùng thực nghiệm. Tạp chí KHKTThú y, XXII(5): 34-43.
Fleck, S.L.and A.H. Moody (1993). Diagnosistic technique in medical parasitology. Cambidge University Press. pp. 10-14.
Hoàng Thạch, Phan Hoàng Dũng, Lê Thanh Ngà, Nguyễn Thị Mỹ Hiền và Lê Đức Thắng (1997). Kết quả xét nghiệm bệnh tích đại thể và vi thể ở gà bị bệnh cầu trùng. Tạp chí KHKT Thú y, IV(1).
Lê Văn Năm (2004). Bệnh cầu trùng gia súc gia cầm.Nhà xuất bản nông nghiệp, Hà Nội, tr.46.
Nguyễn Thành Chung (2010). Nghiên cứu một số đặc điểm bệnh lý chủ yếu của bệnh cầu trùng gà. Luận văn thạc sỹ nông nghiệp, Đại họcNông nghiệp,Hà Nội, tr.78.
Nguyễn Phúc Khánh, Trần Ngọc Bích và Nguyễn Hồ Bảo Trâm (2015). Khảo sát tình hình nhiễm cầu trùng và chỉ tiêu sinh lý máu trên đàn gà ở quận Bình Thủy, Thành phố Cần Thơ. Tạp chí khoa học,Trường Đại học Cần thơ, 35:1-5.
Phạm Sỹ Lăng và Tô Long Thành (2006).Bệnh đơn bào ký sinh ở động vật nuôi.Nhà xuất bản Nông nghiệp, Hà Nội,tr.25.
Prophet, E.B. (1992). Laboratory methods in histotechnology Washington, D.C: American Registry of Pathology.
Reid, W.M. (1978). Coccidiosis. In:Diseases of Poultry,7th editionAmes, IA: Iowa State Univ. Press.
Shirley, M.W. (1986). New methods for identifications of species and strains of Eimeria. Reseach in avian coccidiosis. pp. 13-25.