KẾT QUẢ PHÁT HIỆN Avian nephritis virus(ANV) Ở GÀ TẠI VIỆT NAM

Ngày nhận bài: 03-06-2021

Ngày duyệt đăng: 10-01-2022

DOI:

Lượt xem

0

Download

0

Số: Tập 20 Số 2 (2022)

Chuyên mục:

CHĂN NUÔI – THÚ Y – THỦY SẢN

Cách trích dẫn:

Giáp, N., Trang, Đào, Trinh, L., Đức, N., Phượng, C., & Lệ, H. (2024). KẾT QUẢ PHÁT HIỆN Avian nephritis virus(ANV) Ở GÀ TẠI VIỆT NAM. Tạp Chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam, 20(2), 133–139. http://testtapchi.vnua.edu.vn/index.php/vjasvn/article/view/944

KẾT QUẢ PHÁT HIỆN Avian nephritis virus(ANV) Ở GÀ TẠI VIỆT NAM

Nguyễn Văn Giáp (*) 1 , Đào Đoan Trang 2 , Lê Thị Trinh 3 , Nguyễn Quang Đức 3 , Cao Thị Bích Phượng 1 , Huỳnh Thị Mỹ Lệ 1

  • 1 Khoa Thú y, Học viện Nông nghiệp Việt Nam
  • 2 Trung tâm Thực nghiệm và Bảo tồn vật nuôi, Viện Chăn nuôi
  • 3 Công ty cổ phần Thú y xanh (Greenvet)

    • Từ khóa

    Avian nephritis virus, RT-PCR, đặc điểm sinh học phân tử

    Tóm tắt


    Bệnh viêm thận ở động vật thuộc lớp chim (avian nephritis) là bệnh truyền nhiễm gây ra bởi một số loại virus, trong đó có virus gây bệnh Viêm phế quản truyền nhiễm(Infectious bronchitis virus,IBV) và Avian nephritis virus(ANV). Ở Việt Nam, bệnh tích viêm thận thường được chẩn đoán liên quan tới IBV. Trong nghiên cứu này, kỹ thuật RT-PCR được dùng để phát hiện ANV. Kết quả đã phát hiện ANV ở ca bệnh có bệnh tích viêm thận tích muối urat và âm tính với IBV. Giải mã và phân tích trình tự gen ORF1a của chủng G19.24.2 cho thấy chủng này tương đồng 95,3% so với chủng ANV/CHN/BJCP510-2/2018 (MN732558)phát hiện tại Trung Quốc năm 2018. Dựa vào đặc điểm phân nhánh của cây phát sinh chủng loại, chủng ANV phát hiện trong nghiên cứu được xếp vào genotype 7.

    Tài liệu tham khảo

    Adzhar A., Shaw K., Britton P. & Cavanagh D. (1996). Universal oligonucleotides for the detection of infectious bronchitis virus by the polymerase chain reaction. Avian Pathol. 25(4):817-36.

    Chu D.K., Leung C.Y., Perera H.K., Ng E.M., Gilbert M., Joyner P.H., Grioni A., Ades G., Guan Y., Peiris J.S. & Poon L.L. (2012). A novel group of avian astroviruses in wild aquatic birds. J Virol. 86(24):13772-8.

    Chamings A., Hewson K.A., O'rourke D., Ignjatovic J. & Noormohammadi A.H. (2015). High-resolution melt curve analysis to confirm the presence of co-circulating isolates of avian nephritis virusin commercial chicken flocks. Avian Pathol. 44(6):443-51.

    Donato C. & Vijaykrishna D. (2017). The broad host range and genetic diversity of mammalian and avian astroviruses. Viruses.9(5):102.

    Espinoza L.L., Beserra L.a.R., Soares R.M. & Gregori F. (2016). Turkey astrovirus type 1 (TAstV-1) and chicken astrovirus (CAstV) detection in Brazilian chicken flocks. Avian Diseases.60(3):681-687.

    Fernandez-Correa I., Truchado D.A., Gomez-Lucia E., Domenech A., Perez-Tris J., Schmidt-Chanasit J., Cadar D. & Benitez L. (2019). A novel group of avian astroviruses from Neotropical passerine birds broaden the diversity and host range of Astroviridae. Sci Rep.9(1):9513.

    Hall T. (1999). BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT, Nucl. Acids. Symp. Ser. 41:95-98.

    Imada T., Yamaguchi S. & Kawamura. H. (1979). Pathogenicity for baby chicks of the G-4260 strain of the picornavirus “avian nephritis virus”. Avian Dis.23(3):582-8.

    Imada T., Yamaguchi S., Mase M., Tsukamoto K., Kubo M. & Morooka A. (2000). Avian nephritis virus(ANV) as a new member of the family Astroviridae and construction of infectious ANV cDNA. J Virol. 74(18): 8487-93.

    Kauer R.V., Koch M.C., Hierwege, M.M., Werder S., Boujon C.L. & Seuberlich T. (2019). Discovery of novel astrovirus genotype species in small ruminants. Peer J. 7: e7338.

    Kho C.L., Mohd-Azmi M.L., Arshad S.S. & Yusoff K. (2000). Performance of an RT-nested PCR ELISA for detection of Newcastle disease virus. J Virol Methods.86(1):71-83.

    Lagan Tregaskis P., Devaney R. & Smyth V.J. (2021). The first whole genome sequence and characterisation of avian nephritis virus genotype 3.Viruses.13(2).

    Lemoine F., Domelevo Entfellner J.B., Wilkinson E., Correia D., Davila Felipe M., De Oliveira T. & Gascuel O. (2018). Renewing Felsenstein's phylogenetic bootstrap in the era of big data. Nature. 556(7702): 452-456.

    Mandoki M., Bakonyi T., Ivanics E., Nemes C., Dobos-Kovacs M. & Rusvai M. (2006). Phylogenetic diversity of avian nephritis virus in Hungarian chicken flocks. Avian Pathol. 35(3): 224-9.

    Meulemans G. & Van Den Berg T.P. (2019). Nephropathogenic avian infectious bronchitis viruses. World's Poultry Science Journal. 54(2):145-153.

    Minh B.Q., Schmidt H.A., Chernomor O., Schrempf D., Woodhams M.D., Von Haeseler A. & Lanfear R. (2020). IQ-TREE 2: new models and efficient methods for phylogenetic inference in the genomic era. Mol Biol Evol. 37(5):1530-1534.

    Pantin-Jackwood M., Todd D. & Koci M.D. (2012). Avian Astroviruses. In:Astrovirus Research.Schultz-Cherry, S. (ed.). Springer New York New York, NY. pp. 151-180.

    Rozas J., Ferrer-Mata A., Sanchez-Delbarrio J.C., Guirao-Rico S., Librado P., Ramos-Onsins S.E. & Sanchez-Gracia A. (2017). DnaSP 6: DNA sequence polymorphism analysis of large data sets. Mol Biol Evol.34(12):3299-3302.

    Smyth V.J. (2017). A review of the strain diversity and pathogenesis of chicken astrovirus.Viruses. 9(2): 29.

    Todd D., Trudgett J., Smyth V.J., Donnelly B., Mcbride N. & Welsh M.D. (2011). Capsid protein sequence diversity of avian nephritis virus. Avian Pathol.40(3):249-59.

    Zhao W., Zhu A.L., Yu Y., Yuan C.L., Zhu C.X., Yang Z.B., Cui L. & Hua X.G. (2011). Complete sequence and genetic characterization of pigeon avian nephritis virus, a member of the family Astroviridae. Arch Virol. 156(9):1559-65.