NẤM Alternaria alternata GÂY BỆNH ĐỐM LÁTRÊN BẮP CẢI (Brassica oleracea L. var. capitata) TẠI TỈNH NGHỆ AN

Ngày nhận bài: 30-08-2023

Ngày duyệt đăng: 05-01-2024

DOI:

Lượt xem

0

Download

0

Số: Tập 22 Số 1 (2024)

Chuyên mục:

KỸ THUẬT VÀ CÔNG NGHỆ

Cách trích dẫn:

Cảnh, N., Trường, N., Thu, N., Thủy, V., Tâm, Đặng, Huệ, N., & Hiển, P. (2024). NẤM Alternaria alternata GÂY BỆNH ĐỐM LÁTRÊN BẮP CẢI (Brassica oleracea L. var. capitata) TẠI TỈNH NGHỆ AN. Tạp Chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam, 22(1), 107–114. http://testtapchi.vnua.edu.vn/index.php/vjasvn/article/view/1248

NẤM Alternaria alternata GÂY BỆNH ĐỐM LÁTRÊN BẮP CẢI (Brassica oleracea L. var. capitata) TẠI TỈNH NGHỆ AN

Nguyễn Xuân Cảnh (*) 1 , Nguyễn Xuân Trường 2 , Nguyễn Thị Thu 1 , Võ Thị Bích Thủy 1 , Đặng Thị Thanh Tâm 1 , Nông Thị Huệ 1 , Phạm Hồng Hiển 3

  • 1 Khoa Công nghệ sinh học, Học viện Nông nghiệp Việt Nam
  • 2 Viện Sinh học nông nghiệp, Học viện Nông nghiệp Việt Nam
  • 3 Ban Khoa học và Hợp tác quốc tế, Viện Khoa học Nông nghiệp Việt Nam

    • Từ khóa

    Alternaria alternata, bắp cải, bệnh đốm lá

    Tóm tắt


    Nghiên cứu nhằm mục đích phân lập và xác định rõ tác nhân gây bệnh đốm lá trên bắp cải (Brassica oleracea L. var. capitata) tại xã Hùng Tiến, huyện Nam Đàn, tỉnh Nghệ An. Mười mẫu lá bắp cải có các triệu chứng bệnh đốm lá đã được thu thập tại ba ruộng. Bằng biện pháp phân lập và kiểm tra đặc điểm hình thái các chủng nấm phân lập. Kết quả nghiên cứu cho thấy, các khuẩn lạc phân lập từ bề mặt cắt các mảnh lá bệnh đều giống nhau về mặt hình thái (kí hiệu là BC01). Bằng phương pháp phân lập và kiểm tra đặc điểm hình thái cho thấy, các khuẩn lạc phân lập từ bề mặt cắt các mảnh lá bệnh đều giống nhau về mặt hình thái (kí hiệu là BC01). Chủng BC01 có tản nấm màu oliu sẫm, viền trắng, sợi nấm bông, chuỗi bào tử phân nhánh, bào tử màu nâu hình bầu dục hoặc elip với một mỏ hình nón ngắn ở đầu, có từ 0-3 vách ngăn dọc và 1-5 vách ngăn ngang. Kích thước bào tử trong khoảng từ 10,17 đến 40,06 × 4,16 đến 13,09µm. Kết quả phân tích trình tự gen vùng ITS và đặc điểm hình thái đã xác định được chủng BC01 thuộc loài Alternaria alternata. Các triệu chứng bệnh quan sát được sau 7 ngày tái lây nhiễm chủng BC01 giống với các triệu chứng ban đầu từ lá phân lập. Tại vị trí lây nhiễm, các sợi nấm bệnh phát triển dày đặc xâm lấn sâu trong mô lá, trong khi trên lá đối chứng không có triệu chứng bệnh.

    Tài liệu tham khảo

    Alexandra Ș.I.M. & Andreea Daniela O.N.A. (2020). Cabbage (Brassica oleraceaL.). Overview of the Health Benefits and Therapeutical Uses. Hop and Medicinal Plants. pp. 1-2.

    Al‐Lami H.F.D., You M.P. & Barbetti M.J. (2019). Incidence, pathogenicity and diversity of Alternaria spp. associated with Alternaria leaf spot of canola (Brassica napus) in Australia. Plant Pathology. 68(3): 492-503.

    AnejaJ.K., Agarwal A. & Agnihotri A. (2016). Inter and intra-specific diversity in Alternaria species infecting oilseed Brassicas in India. Journal of Oilseed Brassica. 1(2): 102-117.

    Anwaar H.A., Perveen R., Chohan S., Saeed A., Cheema M.T., Qadeer A. & Ali A. (2022). First report of Alternaria alternatacausing Alternaria leaf spot of fig in Pakistan. Plant Disease. 106(2): 759.

    BhadauriaV., Miraz P., Kennedy R., Banniza S. & Wei Y. (2010). Dual trypan-aniline blue fluorescence staining methods for studying fungus-plant interactions. Biotechnic & Histochemistry.85(2): 99-105.

    Degenhardt K.J., Petrie G.A. & Morrall R.A.A. (1982). Effects of temperature on spore germination and infection of rapeseed by Alternaria brassicae, A. brassicicola, and A. raphani. Canadian Journal of Plant Pathology. 4(2): 115-118.

    Dharmendra K., Neelam M., Yashwant K.B., Ajay K., Kamlesh K., Kalpana S. & Adesh K. (2014). Alternaria blight of oilseed Brassicas: A comprehensive review. African Journal of Microbiology Research. 8(30): 2816-2829.

    DingJ.J., Gu X., Yang X.H., Yao L.L., Gao X.D., Zhang M.M. & Li Y.G. (2020). First report of leaf spot of Salvia farinaceacaused by Alternaria alternatain China. Plant Disease. 104(9): 2517-2517.

    Favela‐GonzálezK.M., Hernández‐Almanza A.Y. & De la Fuente‐Salcido N.M. (2020). The value of bioactive compounds of cruciferous vegetables (Brassica) as antimicrobials and antioxidants: A review. Journal of Food Biochemistry. 44(10): 1-21.

    Fernández-BautistaN., Domínguez-Núñez J. A., Moreno M.M.C. & Berrocal-Lobo M. (2016). Plant tissue trypan blue staining during phytopathogen infection. Bio-protocol. 6(24): 1-7.

    Huang K., Tang J., Zou Y., Sun X., Lan J., Wang W. & Liu J. (2021). Whole genome sequence of Alternaria alternata, the causal agent of black spot of kiwifruit. Frontiers in Microbiology. 12: 1-13

    KöhlJ., Van Tongeren C.A.M., Groenenboom‐de Haas B.H., Van Hoof R.A., Driessen R. & Van Der Heijden L. (2010). Epidemiology of dark leaf spot caused by Alternaria brassicicolaand A. brassicaein organic seed production of cauliflower. Plant Pathology. 59(2): 358-367.

    Kumar S., Stecher G., Li M., Knyaz C., & Tamura K. (2018). MEGA X: molecular evolutionary genetics analysis across computing platforms. Molecular Biology and Evolution. 35(6): 1547-1549.

    MaggioniL., Von Bothmer R., Poulsen G. & Branca, F. (2010). Origin and domestication of cole crops (Brassica oleraceaL.): linguistic and literary considerations. Economic Botany. 64: 109-123.

    Mersha Z., Zhang S. & Bartz J. A. (2012). A postharvest fruit disease-black mold rot caused by Alternariasp on imported plum tomatoes in South Florida. The Vegetarian Newsletter. Horticultural Sciences at University of Florida. 579: 1-3.

    Mmbaga M.T., Shi A. & Kim M.S. (2011). Identification of Alternaria alternataas a causal agent for leaf blight in Syringa species. The Plant Pathology Joủnal. 27(2): 120-127.

    MourouM., Raimondo M.L., Lops F. & Carlucci A. (2023). BrassicaceaeFungal Diseases: Molecular Detection and Host–Plant Interaction. Plants. 12(5): 1033-1053.

    MulaosmanovicE., Lindblom T. U., Bengtsson M., Windstam S.T., Mogren L., Marttila S. & Alsanius B.W. (2020). High-throughput method for detection and quantification of lesions on leaf scale based on trypan blue staining and digital image analysis. Plant Methods. 16(1): 1-22.

    Nowicki M., Nowakowska M., Niezgoda A. & Kozik E. (2012). Alternaria black spot of crucifers: symptoms, importance of disease, and perspectives of resistance breeding. Vegetable Crops Research Bulletin. 76: 5-19.

    Pearson R.C. & Hall D.H. (1975). Factors affecting the occurrence and severity of black mold of ripe tomato fruit caused by Alternaria alternata. Phytopathology. 57: 1352-1359.

    PovedaJ., Díaz-González S., Díaz-Urbano M., Velasco P. & Sacristán S. (2022). Fungal endophytes of Brassicaceae: Molecular interactions and crop benefits. Frontiers in Plant Science. 13: 1-20.

    Prusky D. (1996). Pathogen quiescence in postharvest diseases. Annual Review of Phytopathology. 34: 413-434.

    Rotem J. (1994). The genus Alternaria: biology, epidemiology, and pathogenicity. American Phytopathological Society.

    SaharanG.S., Mehta N., Meena P.D. & Dayal P. (2016). Alternaria diseases of crucifers: biology, ecology and disease management.Springer Singapore. 87-98

    Schoch C.L., Seifert K.A., Huhndorf S., Robert V., Spouge J.L., Levesque C.A… & White M.M. (2012). Nuclear ribosomal internal transcribed spacer (ITS) region as a universal DNA barcode marker for Fungi. Proceedings of the national academy of Sciences. 109(16): 6241-6246.

    Schoch C.L., Seifert K.A., Huhndorf S., Robert V., Spouge J.L., Levesque C.A., Chen W. & Fungal Barcoding Consortium. (2012). Nuclear ribosomal internal transcribed spacer (ITS) region as a universal DNA barcode maker for Fungi. Proceedings of the national academy of sciences. 109(16): 6241-6246.

    Schwessinger B. & McDonald M. (2017). High quality DNA from Fungi for long read sequencing eg PacBio, Nanopore MinION V. 2. Plant Pathology. 22(7): 1-8.

    Shi X., Zeng K., Wang X., Liang Z. & Wu X. (2021). Characterization of Alternaria species causing leaf spot on Chinese cabbage in Shanxi province of China. Journal of Plant Pathology. 103: 283-293.

    Simmons E.G. (2007). Alternaria: An identification manual. CBS biodiversity series No. 6. CBS Fungal Biodiversity Centre, Utrecht, the Netherlands.

    Stielow J.B., Levesque C.A., Seifert K.A., Meyer W., Irinyi L., Smits D., Renfurm R., Verkley G.J.M., Groenewald M.,Chaduli D., Lomascolo A., Welti S., Lesage-Meessen L.,Favel A., Al-Hatmi A.M.S., Damm U., Yilmaz N., Houbraken J., Lombard L., Quaedvlieg W., Binder M.,Vaas L.A.I., Vu D.,Yurkov A.,Begerow D.,Roehl O.,Guerreiro M., Fonseca A., Samerpitak K., van Diepeningen A.D.,Dolatabadi S.,Moreno L.F., Casaregola S., Mallet S., Jacques N., Roscini L., Egidi E., Bizet C., Garcia-Hermoso D., Martín M.P., Deng S., Groenewald J.Z., Boekhout T., de Beer Z.W., Barnes I., Duong T.A., Wingfield M.J., de Hoog G.S., Crous P.W., Lewis C.T., Hambleton S., Moussa T.A.A, Al-Zahrani H.S., Almaghrabi O.A., Louis-Seize G., Assabgui R., McCormick W.,Omer G.,Dukik K., Cardinali G., Eberhardt U., de Vries M.& Robert V. (2015). One fungus, which genes? Development and assessment of universal primers for potential secondary fungal DNA barcodes. Persoonia-Molecular Phylogeny and Evolution of Fungi. 35(1): 242-263.

    Troncoso-Rojas R. & Tiznado-Hernández M.E. (2014). Alternaria alternata(black rot, black spot). In Postharvest decay. pp. 147-187.

    White T.J., Bruns T., Lee S.J.W.T. & Taylor J. (1990). Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. PCR protocols: a guide to methods and applications. 18(1): 315-322.

    YuX., Li Z., Zhang J., Guo L., Wang X., Zhao J. & Xiang W. (2023). First Report of Alternaria tenuissimaCausing Leaf Spot on Luffa cylindricain China. Plant Disease. 107(1): 231.